抽象

 

この研究は、Lifewaveパッチがエネルギー場を放出することを実証し、この放出されたエネルギーに対する無細胞のin vitroバイオアッセイを開発するように設計されています。

ヒトDNAは、古典的および非古典的な電磁界（EM）の両方に応答することが知られているため、標的生体分子として使用されました。

 

DNAの電気的特性は、生体内でDNAの生理学的機能と相関することが知られており、電気的特性は外部環境に非常に敏感であるため、測定されました。

DNAを含むガラスバイアルを、P8ツボに置かれたLifewaveパッチの上に置きました。 DNAの電気特性をすぐに測定し、特定の励起条件下で（非パッチコントロールと比較して）大幅に増加することが示されました。

DNAはガラスバリアによってパッチから分離されているため、DNAはパッチによって放出されたある種のエネルギー場によって変化していると結論付けることができます。

 

I.はじめに

 

Lifewaveパッチは、身体から放出される赤外線（IR）エネルギーを吸収し、身体に送り返される「情報信号」を放出すると考えられています（Haltiwanger、xxxx）。

この信号は、立体異性体の化学情報パッチ内。これまでのLifewaveのすべての研究は、（パッチの下で）体内の生物学的効果の測定に焦点を当てていました。

 

本研究では、立体異性体が実際に結晶アンテナとして機能している場合、放射は等方性、または少なくとも多方向性である必要があると仮定しています。

したがって、放射はパッチの上部から放出される必要があり、生体分子はパッチの上に配置すると、エネルギーに反応する可能性があります。

 

これは、Lifewaveパッチが放出するエネルギーのin vitroバイオアッセイを開発するための基礎であるため、この研究の主な目標は、LifeWaveパッチが放出するエネルギーが人間のDNAの電気特性と共鳴し、それを変更することを実証することです。次の目標は、LifeWaveパッチから放出されるエネルギーを測定するためのin vitroバイオアッセイを開発することです。

 

LifeWaveパッチから放出されるエネルギーを測定するために、DNAがターゲット生体分子として選択されたのは、以前の研究で、さまざまな電磁気（EM）（Blank、1997; Borhani、2011）および生体エネルギーと共鳴し、変化することが示されたためです（Rein、1995、Rein、2003）。

 

LifeWaveパッチから放出されるエネルギーを測定する生物学的エンドポイントとして、DNAの電気伝導率が選択されました。

 

A.ヒトDNAの電気伝導度

 

現在、生体分子の電気伝導率は、その電気的特性が確立された物理化学的特性と人体での機能的役割にどのように関係しているかを決定するために使用されています。

たとえば、DNAの電気伝導率は、その中心軸に沿って、個々の鎖全体で生じることがよく知られています（Bakhshi、1994; Fink、1999）。

 

DNAの場合、導電率の測定値はDNA修復の機能的活動と相関しています。導電率の増加は、DNA自体の修復能力の向上に関連しており（Retel、1993）、修復されたDNAは、損傷を受けた同じDNAの20倍の導電率を持ちます（Hartzell、2003）。

 

DNAの導電率の増加は、固有の自己組織化プロセスの強化にも関連しています（Lintao、2000）。一方、導電率の大幅な低下は、DNA鎖のミスマッチに関連しています（Hihath、2005）。したがって、導電率を高める治療は、体にとって有益であると考えることができます。

 

DNAのような生体分子の電気伝導率を測定する1つの方法は、異なる周波数で電流を印加し、電圧スパイクとして応答を測定することです。

他の手法では、異なる周波数で電界を印加し、電流スパイクを測定します。これらの電流電圧技術は、誘電分光法を含むいくつかの市販の分光光度計で使用されています。

 

実際、DNAの電気伝導度を測定するために現在利用可能な多くの方法があります。これらの手法を使用した公開された研究では、DNAの個々の分子が電子、プロトン、ポーラロンを伝導できることが報告されています。

 

これらの亜原子粒子は、さまざまな速度で下方に移動し、DNAヘリックスを通過できます。 DNAの種類、その化学的および物理的特性、およびその外部環境（溶媒特性）に応じて、電荷移動速度は多段階の非伝導体と同じくらい遅い場合も、超伝導体と同じくらい速い場合もあります。共鳴条件下では、DNA内の固有のエネルギー変動により、1ステップのコヒーレント超交換を介して発生する電子デコヒーレンスと電荷移動プロセスが発生します（Xin-Qi 2001）。

この超伝導プロセスは、量子トンネル機構によって発生すると考えられています（Zikic、2006）。

 

したがって、DNAの電気伝導率は、古典的な（オーミック）マルチステップ、インコヒーレントホッピングプロセスとして、または量子トンネリングを介して発生します。これは主流の科学によって認められていますが、体がどのように治癒するかを理解することの意味はほとんど実現されていません。

 

Del GiudiceとCyril Smithが行った導電率測定は、典型的な生体分子であるリゾチームの特定の共振周波数での離散的な電圧ジャンプを示しました（Del Giudice、1989）。それらは非常に狭い帯域幅がジョセフソンのような動作と一致するため、共振周波数と見なされます。

 

このような測定は、超伝導体で観察されるジョセフソンのような挙動に類似した生体分子の巨視的な量子コヒーレント挙動を測定すると考えられています。 Del Giudiceは、この振る舞いを、固有のコヒーレンスドメインによって媒介されるジョセフソン超電流として数学的にモデル化しました（DelGiudice、1988）。これらの結果は、生体分子の巨視的な量子特性を測定する電流電圧技術の能力を示しています。

 

B.量子生物学研究所（QBRL）の方法論

 

QBRLは、さまざまな周波数（25〜100 kHz）で弱い電圧スパイクを印加し、ナノアンペアで電流応答を測定することにより、生体分子の電気的特性を測定する方法を開発しました。量子超交換を測定する可能性を高めるために、独自の方法を使用して標準の電流電圧測定技術が修正されました。

これは、共振条件下で実験的な測定を行うことにより部分的に達成されます。この新しい手法は、以前は一般に人間のDNAの電気的特性、特にその量子特性を特徴付けるためにQBRLで使用されてきました。

 

このような測定値は、電磁エネルギー（古典的および非古典的）、音響エネルギー、生物エネルギー、常磁性エネルギー、さまざまな商用デバイスに保存されている微妙なエネルギーなどの外部エネルギーに非常に敏感であることが示されています。これらの結果は正確な励起条件に大きく依存しますが、実際に再現可能です。この方法は、すべての生体分子および生細胞に容易に適用できます。

 

II。実験プロトコル

 

すべての測定は、2つの電極を含むガラスチャンバーにDNAのサンプルを配置することによって得られました。1つは弱い電圧サージでサンプルを励起し、1つは電流応答を測定します。ヒト胎盤DNA（Sigma Chemical Co）のストック溶液（30ug / ml）を蒸留水で作成し、さまざまな量の塩化ナトリウムの存在下で蒸留水を使用して希釈しました。 LifeWave実験を開始する2日前に、さまざまな溶媒システムの測定を行いました。

 

パッチ実験を開始する前に、被験者を対象とした対照実験も測定しました。

すべての実験で使用された単一の人間の被験者は実験者自身であり、彼は喜んで有能な参加者でした（したがって、同意書は必要ありませんでした）。

対照実験では、左手のひらと右手のひらに心膜8（P8）上のヒトDNAを含むバイアルを保持しました。バイアルを同じ手の3本の小指で所定の位置に保持しました。

被験者はさまざまな時間（20〜45分）ラボの同じ位置に座り、知的にインターネット検索に集中しました。被験者はバイアルに注意を集中せず、これらの実験中に意図的なバイアスが存在しないことを確認するために、中立的な精神状態を維持するように求められました。ただし、実験は盲検化されていません。

 

 

パッチを使用した場合と使用しない場合のすべての実験について、この正確な手順に従った。 翌日、実験手順の後に、左右のP8に置いたLifeWaveパッチの上に新鮮なDNAサンプル（元のストック溶液のアリコート）を保持しました。

 

次の表は、パッチとDNAバイアルの配置を示しています。

 

次の実験変数を使用して共鳴条件を作成しました。A。DNAの調製a）さまざまな濃度（0.01〜1％）の溶媒へのNaClの添加b）ストックDNAの希釈（1/10〜1/100）

 

B.分光光度計の設定と測定のセットアップc）異なる励起電圧（10〜50 mV）d）異なる励起周波数（25〜100 kHz）e）電極の分離（2〜20 mm）f）露出時間（20〜60分）

 

C.データ分析g）振幅対極性vs電流応答の形状h）発生率対信号強度の確率的尺度

 

これらの実験変数を使用して、制御条件と実験（パッチ）条件の間で最適な差を得ることができるように共振条件が見つかりました。

これらの共振条件を使用して、各制御条件および実験条件に対して10〜14の連続測定が行われました。

結果セクションで報告されたすべての対照条件および実験条件について、連続した測定をさらに2回（別々の日）（n = 3）繰り返しました。

 

III。データ分析

 

最適な45分の治療期間の後、測定された（ベースラインと比較して）現在の応答は、連続測定で大きく変化しました（20％から600％の刺激）。

現在の合計数が各スパイクの大きさではなく、スパイクが決定されました。

 

発生率は、現在の応答の数を連続測定の総数で割って計算されました。

次に、計算された発生率の値に対して標準のt検定を使用して統計分析を実行しました。

これらの値は、「結果」セクションの表に示されています。

 

場合によっては、コントロールの2σ（標準偏差の2倍）を計算して統計的有意性も決定されました。

この数値は「誤差範囲」を表し、誤差範囲より大きい実験値は、95％の信頼水準で統計的に有意であると見なすことができます（p = 0.05）。

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

IV結果

 

励起信号の周波数と振幅を変化させ、上記の実験変数を変更すると、ほとんどの場合、コントロールと同様の電流応答値が得られました。

したがって、ほとんどの実験では、パッチの有無にかかわらず、P8に配置されたDNAの導電率に違いはありませんでした。

ただし、一部の励起パラメーターでは、対照条件と実験条件の間に統計的に有意な差が見られました。

以下の3つの表は、これらの条件下で取得された現在の応答（発生率の値として）を示しています。

実験値が制御値（電気伝導率の刺激）よりも大きいデータのみを検索するため、片側p値を使用するのが妥当です。

それでも、表1のデータをエラーマージン法を用いて使用して再分析すると、両方のデータセットで、パッチ値がそれぞれのコントロールの2σ値よりもはるかに高いことがわかります。

したがって、両方の統計データのセットをまとめると、AeonパッチはDNAの電気伝導度を統計的に増加させると結論付けるのが合理的です。

 

3つの表の結果は、特定の励起パラメーター（周波数と振幅）を使用した共鳴条件下で、テストした3つのLifeWaveパッチがヒトDNAの電気伝導度を増加させることを示しています。

 

Aeonパッチのこの結論に到達するために、2つの異なる統計手法を使用して生データを分析しました。

 

これらの実験条件下で得られる標準偏差値が比較的大きく、独立した測定値が比較的少ないため（n = 3）、これが必要でした。

 

実験実行と制御実行の間のデルタ値に基づいて、39.8 kHzで励起されたときのAeonパッチがDNAの刺激に最も効果的であると結論付けることができます。

EEパッチとSP6パッチの効果はやや劣り、互いに類似した反応を示しました。

 

DNA刺激が特定の励起周波数（および対応する電圧）でのみ発生するという事実は、この周波数、たとえばSP6パッチでは35.5 kHzがパッチからDNAへの情報の転送に必要であることを示しています。

 

これらの実験では、DNAと相互作用する3つの異なるエネルギーがあります。

1.コロラド州リッジウェイにある研究室の地磁気

2. P8ツボによって放出されるバイオエネルギー

3. LifeWaveパッチから放出されるエネルギー

 

これらの3つのエネルギーに加えて、各測定中にDNAを励起するために使用される（特定の周波数での）電圧スパイクから生成される4番目のエネルギー（電界）があります。ただし、制御条件と実験条件の唯一の違いは、LifeWaveパッチからのエネルギーの存在です。ここでは、励起周波数がパッチの共振周波数と一致したときに、情報がパッチからDNAに転送されることが提案されています。この仮説が正しければ、次の共振周波数がLifeWaveパッチに割り当てられる可能性があります。

導入部で説明したように、電気伝導率の増加は、細胞内のDNAの機能特性に関連し、場合によっては制御します。

測定は共鳴条件下で行われるため、電子の伝導性は、量子トンネリングを含む単一ステップの超交換メカニズムを介して発生すると考えられています。

 

したがって、DNAのこの特定の量子特性は、3つのLifewaveパッチすべてによって強化されると結論付けることもできます。

Lifewaveパッチから生成されたエネルギー場が生体分子レベルで量子プロセスを刺激する能力は、基本的に重要です。

この結論は、体内のさまざまな治癒プロセスを促進するLifewaveパッチの既知の臨床効果と一致しています。

 

 

資金提供Lifewave and Quantum Biology Research Labは事前の契約に同意し、5000ドル（総額の半分）を前払いし、残りの5000ドルは最終報告書の完了時に支払うことを定めました。

 

参考文献

バフシAK。 「タンパク質およびDNAの電子伝導の調査。」Prog Biophys Mol Biol。 1994; 61（3）：187-253。

ブランクM、グッドマンR。「電磁界はDNAと直接相互作用しますか？」 111〜115、1997

Borhani N、Rajaei F、Salehi Z、Javadi A.極低周波電磁界にさらされたマウス胚のDNA断片化の分析。 Electromagn Biol Med。 2011 12月; 30（4）：246-52。

Del Giudice E、Preparata G et al。 「自由な電気双極子レーザーとしての水」。 Phys Rev Lett。 1988 61（9）：1085-1088。デルジュディツェ、ドリアS他「生体システムにおける磁束の量子化とジョセフソンの挙動」Physica Scripta 1989; 40（1）：786-791。

Fink H-W、SchönenbergerC.「DNA分子による電気伝導」Nature 398、407-410,1999。

Haltiwanger S.「ライフウェーブテクノロジーの生体電気的側面」社内メモ

Hartzell B.「ニックと修復されたλ-DNAの比較電流-電圧特性」Appl。物理学レット。 82（26）、4800（2003）

Hihath J、Xu B、Zhang P、Tao N.電気伝導度測定による一塩基多型の研究。 Proc Natl Acad Sci USA。 2005; 102：16979–16983。

カイ・リンタオ、田畑仁、川合知二自己組織化DNAネットワークとその電気伝導度」Appl。物理学レット。 77、3105（2000）; doi：10.1063 / 1.1323546

 

大村Y、他「特定の分子の近くを通過する光子または電子ビームによる分子情報の双方向伝送、およびその臨床的および基礎的な研究応用…」Acupunct Electrother Res。 1992; 17（1）：29-46。

Rein G.「水溶液中のヒトDNAの立体構造状態に対する生体エネルギーのin vitro効果」J. Acupuncture＆Electrotherapeutics Res。 20

 ：173-180、1995

Rein G「生物系間の生体情報と非局所相互作用。」Proc。 Society for Scientific Exploration、コロラド州ボルダー、2011年6月

Rein G.「癒しの施術者の意識的意図の影響を定量化するための新しいin Vitroバイオアッセイの利用」人全体の癒しの科学

  、Vol.2、R.Roy（ed）。 Iuniverse Inc、リンカーン、NE、p222-236、2003

J. Retel et al。 「酸化的DNA損傷の突然変異特異性」、Mutat。 解像度 299（1993）、p。 165。

Xin-Qi、Lら。 「DNAでの電荷移動のスーパーエクスチェンジを介した逐次ホッピング理論」J Phys Chem A 105、9563-67、2001

Zikic R等。 「DNA塩基間のトンネルコンダクタンスの特性評価」Phys Rev E Stat Nonlin Soft Matter Phys。 2006年7月; 74（1 Pt 1）：011919

2012年3月